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    直播答疑 | 三大難養細胞培養解析

    更新時間:2023-08-11  |  點擊率:2569

    6月29日,普諾賽就 RAW 264.7、SF9、NK-92這三個細胞進行了一場直播分享,分別詳細講解了三株細胞的培養方法及需要注意的問題。直播回放可以點擊普諾賽公眾號菜單欄【資料中心】-【往期直播回放】查看學習。本期直播答疑,從直播間的提問中,篩選出其中有代表性的問題,逐一進行解答。


    01

    RAW 264.7細胞如何傳代?用細胞刮刀對細胞有影響嗎?一定要吹下來嗎?吹不下來的是狀態不好的細胞嗎?

    RAW 264.7細胞傳代方法:


    ① 培養基中的漂浮的細胞離心收集

    ② 輕拍培養瓶,將貼壁松散的細胞拍起來

    ③ 用1ml的槍把貼壁的細胞吹下來

    ④ 將細胞懸液轉移到15ml離心管

    ⑤ 1200rpm 離心3min

    ⑥ 去上清,用新鮮培養基重懸細胞

    ⑦ 加入培養皿中(建議用培養皿,方便吹打)


    當有較多圓形細胞不好吹下來時,可以使用細胞刮刀將細胞刮下來,使用細胞刮刀時需要注意:需要留適量培養基覆蓋細胞,用細胞刮刀輕輕刮下細胞,朝一個方向刮,避免反復刮,這種方法可能會造成細胞損傷。


    吹打不下來的細胞可能是分化的細胞,因為分化的細胞貼壁較牢。

    02

    RAW264.7細胞培養3天后依然漂浮嚴重,怎么辦?

    需要觀察下細胞的增殖速度,細胞是否是聚團漂浮,如果細胞增殖且聚團漂浮的話,證明細胞活力是可以的。可以嘗試將漂浮細胞收集,吹散成單顆,測細胞的數量和活力,培養傳代時活細胞密度保持在1-1.5*105/mL,多傳幾次,細胞就會貼壁展開了。

    03

    RAW264.7在誘導M2時,有的文章用IL-4加IL-10,只用IL-4去誘導差別大嗎?M2極化多長時間?

    文章中有關RAW264.7細胞在進行M2 型誘導時有的加 IL-4(20 ng/ml)或者 IL4+IL13 誘導、仿生層狀殼聚糖支架(LCS),WB/QPCR 檢測。主要是看相關指標檢測結果(MR(CD206),ArgI 高表達),極化時間需要參考文獻,最好是做下預實驗,摸索下濃度和時間。

    04

    RAW264.7沒傳幾代就開始分化了,要怎么補救?

    細胞生長形態以圓形為主,存在梭形狀態,此時細胞依舊處于分化程度較低的狀態;細胞形態不規則,多觸角狀態時分化程度較高,貼壁牢固,強行吹打或細胞刮取不當會導致細胞進一步分化,傳代時可選擇只收集能夠輕輕吹打下來的圓形細胞,這部分細胞分化程度最-低,狀態最佳,同時更換新的培養容器,可以每天將圓形細胞輕輕吹下來。

    05

    有什么辦法,可以讓RAW264.7生長慢些?

    細胞倍增時間是12-30h,本身生長速度快,若是不想頻繁傳代,可以嘗試擴大細胞的傳代比例,降低培養基中的血清含量。

    06

    NK-92細胞如何傳代?

    細胞生長時聚集的細胞團會逐漸增大,正常的細胞團顯微鏡下為白色透亮的細胞團,若細胞聚團比較多,100倍鏡下有6-8個大的細胞團可傳代。


    傳代方法:將培養瓶輕輕晃幾下,或者用移液器輕輕吹散(一般吹2-3次即可),吹打力度不可過大,不要全部吹散,否則會出現大量死細胞和細胞碎片。均分到兩個瓶子里,每瓶再補充等量培養基;


    細胞對營養要求也很高,不能團塊過大大導致營養不足。

    07

    NK-92出現過大細胞團時怎么處理?

    細胞團過大時,鏡下觀察團中部會發暗,中間的細胞會接觸不到營養,可以用槍頭輕輕吹1-2下,吹打力度不能太大,將團吹小,不要全部吹散。

    08

    NK-92細胞有些細胞碎片,如何去除呢?

    NK-92細胞平常培養時是會有細胞碎片的,若是有大量碎片,可以一周低速離心一次(800rpm,3min),去除部分死細胞和細胞碎片。


    09

    NK-92細胞活率一直都是80%-90%,達不到90%以上,正常嗎?

    NK-92細胞培養過程中死細胞和細胞碎片都懸浮在培養基中,培養過程中不會完-全沒有死細胞和細胞碎片,且細胞聚團懸浮,平常將細胞吹散成單顆測活力時,也會導致部分細胞損傷,所以活率在80-90%是正常的范圍。

    10

    SF9馴化從含血清培養基過度到無血清培養基細胞一直長不起來是怎么回事?

    馴化前細胞活率要比較高,能夠達到90%以上,馴化過程需要把握好細胞的密度,避免接種密度過低,導致生長速度慢,若是有碎片可以采用800轉離心去除。

    11

    bacmid轉染SF9細胞,常規轉染試劑可以嗎?bacmid轉染SF9成功的現象一般是什么?有沒有參考文獻?

    可以采用Cellfectin® II 試劑,是一種陽離子脂質制劑,設計用于昆蟲細胞的極-佳轉染;PEI MAX也可用于轉染,轉染時可篩選出合適轉染培養基,有利于轉染效率。


    一般會加一個GFP的對照質粒,3-4天后可觀察是否有熒光反應,昆蟲細胞轉染后約5-7天后,大部分細胞變大病變,出現裂解的現象。

    12

    細胞出現小黑點,把雙抗量加大,能搶救得過來嗎?

    首先要確認下黑點是什么污染,如果是細菌污染,污染物(黑點)較少,細胞形態和生長速度未收到影響時可以嘗試5%雙抗洗滌2遍,培養基中加大雙抗比例,去除污染;如果不是細菌污染,加雙抗是沒有效果的,需要注意消化時間的把握,傳代過程盡量少吹打。

    13

    支原體污染了會是什么樣子的?

    支原體污染的細胞一般表現為細胞背景臟,背景有大量細胞碎片,細胞生長速度也可能受到影響,具體是否是支原體污染需要進行進一步檢測,單憑顯微鏡觀察并不能確定是支原體污染。





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